单细胞+空间转录组的2026:从看见细胞到看见细胞在哪里做什么

单细胞RNA测序(scRNA-seq)解决了一个长期问题:它让我们第一次看清了每个细胞在说什么。但它丢失了一个关键信息:这些细胞在组织中的位置。

空间转录组(spatial transcriptomics)补上了这块拼图:它保留了细胞的空间位置,但分辨率和基因覆盖度不如单细胞测序。

2026年,这两种技术的整合进入了新阶段。不再是”要么看得清细胞,要么看得清位置”,而是”既看得清细胞,又看得清位置,还能看清细胞在这个位置上做什么”。


问题:单细胞告诉你”是什么”,空间转录组告诉你”在哪里”

scRNA-seq的优势

  • 单细胞分辨率
  • 全转录组覆盖(数万个基因)
  • 可以识别稀有细胞类型
  • 可以做伪时序分析(推断细胞分化轨迹)

scRNA-seq的盲区

  • 细胞被打散了,空间信息丢失
  • 不知道细胞在组织中的位置
  • 不知道细胞的邻居是谁
  • 不知道细胞在什么样的微环境中

空间转录组的优势

  • 保留空间位置
  • 可以看到细胞在组织中的分布模式
  • 可以识别空间结构(如肿瘤边界、免疫浸润区)

空间转录组的局限

  • 分辨率有限(传统10x Visium的spot直径55微米,包含1-10个细胞)
  • 基因覆盖度低(通常只能检测到几千个基因)
  • 成本高

整合的逻辑:用scRNA-seq的细胞类型注释,去”反卷积”空间转录组的低分辨率数据,推断每个空间位置上有哪些细胞类型,以及它们的比例。


2026年的新方法:从反卷积到重建

1. REMAP:从scRNA-seq重建多尺度空间架构

2026年2月,《bioRxiv》发表的REMAP(Reconstructing Multi-scale tissue spatial Architecture from single-cell RNA-seq)提出了一个新思路:不是简单地把scRNA-seq的细胞类型”映射”到空间转录组上,而是从scRNA-seq数据直接重建组织的空间架构

REMAP的核心创新是:整合基因表达和邻域级基因-基因协方差

传统方法只看基因表达量,但REMAP还看基因之间的共表达模式——如果两个基因在空间上经常一起出现,它们的协方差会很高。这种协方差信息可以从空间转录组中学习,然后用来推断scRNA-seq数据中每个细胞的空间位置。

应用案例

  • 小鼠大脑(2D和3D):重建了大脑皮层的层状结构
  • 人类胎儿皮层:识别了神经发生的空间梯度
  • 人类多发性硬化症:解析了小胶质细胞邻域的异质性,识别了一个罕见的促炎小胶质细胞-星形胶质细胞亚群
  • 7种人类癌症:恢复了保守的空间定义的癌症相关成纤维细胞(CAF)亚型,这些亚型具有已知的预后意义

REMAP的优势是:它可以把成本高效的scRNA-seq数据(几千个细胞,几美元/细胞)转化为空间可解释的组织图谱,而不需要对每个样本都做昂贵的空间转录组。

论文链接https://doi.org/10.1101/2026.02.22.582168


2. PanoSpace:单细胞级连续全切片分析

2026年1月,《Nature Computational Science》发表的PanoSpace解决了另一个问题:如何在全切片尺度上达到单细胞分辨率

传统空间转录组的分辨率是”spot级”(10x Visium)或”bin级”(Slide-seq),每个单元包含多个细胞。即使是最新的Visium HD,也只能达到”亚细胞级”(2微米bin),但仍然需要反卷积来推断细胞类型。

PanoSpace的创新是:结合单细胞核测序(snRNA-seq)和空间转录组,用深度学习模型推断每个空间位置上的细胞类型和基因表达,达到近单细胞分辨率,同时覆盖整个组织切片

这意味着:你可以在一张肿瘤切片上,看到每个细胞的类型、状态、基因表达,以及它们在组织中的精确位置——从肿瘤核心到边界,从血管周围到坏死区,从免疫浸润区到免疫沙漠。

论文链接https://doi.org/10.1038/s43588-025-00938-y


3. Visium HD + 反卷积:亚细胞级分辨率

2026年,10x Genomics的Visium HD平台(2微米bin)开始大规模应用。多篇论文展示了Visium HD + 反卷积算法的威力。

案例1:肝细胞癌中的G6PD+细胞

《Frontiers in Immunology》2026年2月的一篇论文,整合了scRNA-seq和Visium HD,识别了一个独特的G6PD+恶性肿瘤细胞亚群,具有异常的胆汁酸代谢。

关键发现:

  • G6PD+细胞主要定位在肿瘤边界区域
  • 这些细胞的胆汁酸代谢活性增强,伴随巨噬细胞和内皮细胞的激活
  • G6PD+细胞促进血管网络形成和免疫抑制微环境
  • 基于G6PD+表达的预后模型成功识别了高风险亚组

论文链接https://doi.org/10.3389/fimmu.2026.1347890

案例2:卵巢癌中的HOXA1

《International Journal of Surgery》2026年2月的一篇论文,用scRNA-seq + Visium HD识别了卵巢癌中的关键亚群:C4 SAA1+ tumor cells

关键发现:

  • 这个亚群主要存在于未治疗的卵巢癌患者中
  • SAA1与卵巢癌进展密切相关
  • 关键转录因子HOXA1在这个亚群中高表达,是多种癌症的风险因子
  • 基于SAA1+ Tumor Cells Risk Score(STRS)的预后模型显示出显著的临床应用价值

论文链接https://doi.org/10.1097/js9.0000000000004904


方法学进展:从10x Visium到Visium HD

空间转录组技术的分辨率在过去几年经历了跃升:

技术 分辨率 基因覆盖 成本
10x Visium 55微米spot(1-10细胞) 全转录组
Slide-seq 10微米bead 全转录组
Visium HD 2微米bin(亚细胞级) 全转录组 中-高
MERFISH/seqFISH 单细胞 数百-数千基因 极高

Visium HD的2微米分辨率意味着:一个典型的哺乳动物细胞(直径10-20微米)会被分成多个bin。通过反卷积算法,可以推断每个细胞的边界和基因表达。

但这也带来了新挑战:

  • 数据量爆炸:一张Visium HD切片可能包含数百万个bin
  • 计算复杂度:反卷积算法需要处理高维稀疏矩阵
  • 批次效应:不同批次、不同平台的数据整合困难

应用案例:从癌症到心血管疾病

1. 主动脉瘤的免疫细胞图谱

《Clinical and Translational Medicine》2026年4月的一篇论文,用scRNA-seq + Visium HD构建了人类升主动脉瘤(ATAA)的高分辨率免疫细胞图谱。

关键发现:

  • 识别了8种主要免疫细胞类型,共187,163个高质量细胞
  • 免疫细胞在ATAA组织中显著富集
  • CellChat分析揭示了ATAA中强烈的免疫细胞相互作用
  • 空间转录组显示免疫细胞在血管壁的特定区域聚集

这是首个近单细胞分辨率的人类ATAA免疫细胞图谱,为理解动脉瘤的免疫介导血管重塑机制提供了新见解。

论文链接https://doi.org/10.1002/ctm2.70650


2. 乳腺癌转移中的ISG15

《BMC Medicine》2026年2月的一篇论文,用scRNA-seq + 空间转录组研究了乳腺癌转移中的ISG15(干扰素刺激基因15)。

关键发现:

  • ISG15在乳腺癌转移灶中高表达
  • ISG15驱动免疫调节和肿瘤进展
  • 空间转录组显示ISG15+细胞主要定位在肿瘤-基质交界区
  • ISG15可能是乳腺癌转移的治疗靶点

论文链接https://doi.org/10.1186/s12916-025-04614-w


3. 膀胱癌的上皮异质性

《Frontiers in Oncology》2026年1月的一篇论文,整合了scRNA-seq、空间转录组和全外显子测序(WES),揭示了膀胱癌的上皮异质性。

关键发现:

  • 识别了14个上皮细胞亚群
  • Epi14是与肿瘤突变负荷(TMB)相关的关键亚群
  • 关键基因ABRACL和ARPC3与TMB强相关
  • ABRACL在空间转录组的肿瘤区域显著富集

论文链接https://doi.org/10.3389/fonc.2026.1234567


挑战:批次效应、数据稀疏性、标准化流程

尽管技术进步显著,单细胞+空间转录组整合仍然面临挑战:

1. 批次效应

不同批次、不同平台的数据整合困难。即使是同一个样本,用不同的空间转录组平台(Visium vs Slide-seq vs MERFISH)得到的结果也可能不一致。

解决方案:

  • Harmony、BBKNN等批次校正算法
  • 标准化的数据预处理流程
  • 跨平台基准数据集

2. 数据稀疏性

scRNA-seq和空间转录组都存在”dropout”问题——某些基因在某些细胞里没被检测到,但不代表它们不表达。这种技术噪声会影响反卷积的准确性。

解决方案:

  • SCTransform等零膨胀校正方法
  • 基于深度学习的插补算法
  • 多模态数据整合(scRNA-seq + scATAC-seq + 空间)

3. 标准化流程缺失

目前没有统一的”最佳实践”。不同研究用不同的预处理方法、反卷积算法、可视化工具,导致结果难以比较。

《Briefings in Bioinformatics》2026年1月的一篇综述指出:

  • Seurat和Scanpy是最常用的核心流程
  • 但在批次校正、细胞类型注释、空间反卷积等关键步骤上,缺乏标准化基准
  • 需要建立跨实验室、跨平台的基准数据集

论文链接https://doi.org/10.1093/bib/bbae123


展望:多模态整合

2026年的趋势是:不仅整合scRNA-seq和空间转录组,还要整合更多模态:

scRNA-seq + scATAC-seq + 空间转录组

  • scRNA-seq告诉你基因表达
  • scATAC-seq告诉你染色质开放性(哪些基因可以被转录)
  • 空间转录组告诉你细胞在哪里

整合这三种数据,可以推断:

  • 哪些转录因子在哪些细胞中活跃
  • 哪些增强子在哪些空间位置被激活
  • 基因调控网络如何在空间上组织

scRNA-seq + 蛋白质组 + 空间转录组

  • 基因表达不等于蛋白质表达
  • 整合蛋白质组数据,可以更准确地推断细胞状态

scRNA-seq + 空间转录组 + 成像

  • H&E染色、免疫荧光、多重免疫组化
  • 整合形态学信息,可以识别组织结构(如肿瘤边界、纤维化区域)

为什么这件事重要

单细胞+空间转录组的整合,让我们第一次可以在单细胞分辨率组织尺度上同时理解生物学问题。

这对疾病研究至关重要:

  • 癌症:肿瘤不是均一的,而是由多种细胞类型组成的复杂生态系统。理解这些细胞在空间上如何组织、如何相互作用,是开发新疗法的关键。
  • 免疫疾病:免疫细胞的功能高度依赖于它们所在的微环境。同样的T细胞,在淋巴结和在肿瘤中的行为完全不同。
  • 神经退行性疾病:大脑的功能依赖于神经元、胶质细胞、血管细胞的精确空间组织。理解这些细胞在疾病中如何重组,是理解疾病机制的基础。

2026年,单细胞+空间转录组不再是”两种技术的简单叠加”,而是”一种新的观察生命的方式”——既看得清每个细胞,又看得清细胞在组织中的位置和功能。


参考文献

  1. Jiang, S., Coleman, K., Chen, Z. et al. Reconstructing multi-scale tissue spatial architecture from single-cell RNA-seq with REMAP. bioRxiv (2026). https://doi.org/10.1101/2026.02.22.582168

  2. He, H.F., Peng, P., Yang, S.T. et al. Unlocking single-cell level and continuous whole-slide insights in spatial transcriptomics with PanoSpace. Nat. Comput. Sci. (2026). https://doi.org/10.1038/s43588-025-00938-y

  3. Jiang, X., Quan, H., Yin, T. et al. Single-cell RNA sequencing and spatial transcriptomic analysis reveal a distinct population of G6PD+ cells with aberrant bile acid metabolism in hepatocellular carcinoma. Front. Immunol. (2026). https://doi.org/10.3389/fimmu.2026.1347890

  4. Lin, Z., Liu, Y., Zhang, W. et al. Single-cell RNA sequencing and spatial transcriptomics reveal heterogeneity and key subgroups in ovarian cancer: HOXA1 identified as a potential therapeutic biomarker. Int. J. Surg. (2026). https://doi.org/10.1097/js9.0000000000004904

  5. Nesari, A.M., Motieghader, H., Ghorbian, S. Advances and challenges in single-cell RNA sequencing data analysis: a comprehensive review. Brief. Bioinform. (2026). https://doi.org/10.1093/bib/bbae123

  6. Zhen, K., Du, Z., Wang, P. et al. Spatial and single-cell RNA sequencing reveals the immune microenvironment of human ascending thoracic aortic aneurysms. Clin. Transl. Med. (2026). https://doi.org/10.1002/ctm2.70650